Фип у кошек. Инфекционный перитонит кошек (ФИП)

12.06.2019

Arnold Plotnick MS, DVM, ACVIM, ABVP

Кошачий инфекционный перитонит (Feline Infectious Peritonitis, FIP) редкое, но фатальное вирусное заболевание кошек. Возникает при заражении кошачьим коронавирусом (feline coronavirus, FCoV). Существует множество заблуждений, путаницы и дезинформации, связанных с болезнью. Я (Arnold Plotnick) надеюсь, что данная статья поможет решить большинство проблем и вопросов, которые обычно возникают, если ветеринар предполагает это заболевание у кошки.

Распространение и развитие инфекционного перитонита у кошек.

Коронавирусы могут вызывать множество проблем. Они поражают пищеварительную и дыхательную систему собак и свиней, являются причиной простуды у людей. Наиболее распространенным видом или "биотипом" кошачьих коронавирусов является кишечная форма вируса. Такие вирусы легко передаются от кошки к кошке. Кошки заражаются фекально-оральным способом. Другими словами, FCoV, из фекалий одной кошки каким-то образом попадает внутрь организма другой кошки. После этого вирус начинает размножаться (репродуцируется, создает копии самого себя) в клетках, выстилающих желудочно-кишечный тракт. Кошки инфицированные таким видом вируса, обычно не проявляют явных клинических признаков. Иногда, у зараженных кошек наблюдается самопроходящая диарея , вероятно, являющаяся следствием повреждения клеток кишечника в процессе репликации вируса.

У большинства заразившихся кошек, вирус выходит из организма с фекалиями на протяжении какого-то времени, обычно нескольких месяцев, затем это прекращается. В ответ на заражение, организм инфицированной кошки производит антитела к вирусу. Кошки могут повторно заражаться, и опять распространять вирус, если в окружающей среде они сталкиваются с большим количеством вирусов.

Хотя большинство кошек перестает быть источником вирусов через несколько месяцев, некоторые становятся постоянными носителями, и вирус присутствует в их фекалиях постоянно.

У короновирусов есть важная особенность - они довольно сильно склонны к генетическим изменениям, и, казалось бы, безобидный коронавирус может мутировать в такой вариант, который оказывается более патогенными, чем исходный. Предполагается, что клинические случаи кошачьего инфекционного перитонита возникают именно таким образом. Относительно безвредный кишечный коронавирус мутирует в новый тип коронавируса, который может покинуть желудочно-кишечный тракт и вызвать проблемы в различных системах и органах кошки. Такими мутировавшими коронавирусами являются смертельными в настоящее время вирусы кошачьего инфекционного перитонита.

Вирус FIP запускает в организме кошки реакцию иммунного ответа. Иммунный ответ , однако, является неэффективным и, фактически, только ухудшает дело. Антитела, произведенные против вируса не могут его нейтрализовать. Связываясь с вирусом, образуется комплекс антитело-вирус, который циркулирует с потоком крови и, в конце концов, задерживается и накапливается в стенках кровеносных сосудов, вызывая интенсивную и опасную воспалительную реакцию. Эти воспалительные процессы могут протекать практически в любых системах организма кошки, что объясняет широкий спектр клинических признаков кошачьего инфекционного перитонита. В норме, после того, как антитело прикрепляется к вирусу, клетки иммунной системы, называемые макрофагами, "пожирают" связанный антителом вирус, уничтожая его. Макрофаги, однако, не разрушают вирусы FIP. Вместо этого они транспортируют его в другие части тела, распространяя болезнь по всему телу.

Какие кошки подвержены кошачьему инфекционному перитониту?

Большинство случаев кошачьего инфекционного перитонита случается в молодом возрасте. Фактически, во многих случаях, это вероятно происходит после первой инфекции котенка. Это, скорее всего, связано с тем, что коронавирусы склонны к мутациям. Мутации чаще происходят сразу после заражения, когда происходит активное размножение (наибольшее количество вирусных репликаций), что увеличивает риск превращения обычного кишечного коронавируса в коронавирус FIP. Другими провоцирующими факторами, часто присутствующими у котят, являются незрелость иммунной системы, смена хозяев, стерилизация, вакцинация , и,возможно, сопутствующие заболевания. Пиковое количество случаев кошачьего инфекционного перитонита приходится на кошек в возрасте от 6 месяцев до 2 лет. Хотя жертвами чаще становятся молодые кошки, случаи заболевания наблюдаются также и у взрослых кошек.

Заражение кошачьим коронавирусом не редкость для популяций кошек по всему миру. Примерно от 25 до 40% домашних кошек инфицированы FCoV. В питомниках и больших колониях от 80 до 100% кошек являются носителями вируса. Несмотря на такой высокий уровень контакта с вирусом, кошачий инфекционный перитонит является относительно редким заболеванием. Причина в том, что большинство вирусов, как было описано выше, являются с довольно безобидными штаммами коронавирусов, которые приводят только к легкой диарее. Высокая степень зараженности коронавирусами в питомниках и хозяйствах с несколькими кошками является отражением того факта, что заражения FCoV трудно избежать. Среди кошек всегда может находиться носитель инфекции, выделяющий вирусов с фекалиями.

Заразившиеся кошки в свою очередь тоже начинают распространять вирус. Если кошек достаточно много, повторные заражения происходят постоянно. Исследования показывают, что шести кошек достаточно, чтобы обеспечить постоянное присутствие коронавируса. Риск развития кошачьего инфекционного перитонита в таких питомниках значительно возрастает. Другим возможным фактором риска является генетическая предрасположенность . Исследования кошек с диагнозом "Кошачий инфекционный перитонит", проводимые Университетом Северной Каролины в течение 16 лет показали, что среди породистых кошек, значительно более вероятно заражение Абиссинцев, Бенгальских, Бирманских, Гималайских кошек, Рэгдоллов и Рэксов, в то время как Бурмезские кошки, Экзотические Кроткошерстные, Манксы, Персы и Русские Голубые не проявляют повышенной склонности к инфекции. В колониях кошек случаи кошачьего инфекционного перитонита обычно составляют около 5%, хотя их количество в разных колониях может колебаться в широких пределах. FIP редко развивается у нескольких или всех котят из одного помета. Если в доме одна или две кошки, кошачий инфекционный перитонит также наблюдается крайне редко - у одной кошки из 5000.

Инфекционный перитонит - вирусная болезнь кошек, характеризующаяся анорексией, дегидратацией тканей, лихорадкой, отеками брюшной полости, перитонитом. Сокращенное название ФИП (FIP) происходит от английского названия болезни Feline Infectious Peritonitis. Возбудитель - специфичный для кошек РНК-содержащий вирус, принадлежащий к роду коронавирусов. Коронавирус широко распространен среди кошек, однако заболевание инфекционным перитонитом вызывается только его мутантными формами. По статистике, ФИП заболевает около 10% животных носителей коронавируса, причем котята гораздо чувствительнее, чем взрослые животные. Распространению инфекции способствует бесконтрольное разведение, при котором один кот-производитель имеет вязки со многими кошками из разных питомников, являясь потенциальным переносчиком болезни.

Заражение . Больная кошка выделяет вирус с испражнениями, мочой и носовыми истечениями. Заражение может происходить контактным путем, через контакт кошки с экскрементами заболевшего животного, через корм, не исключается воздушно-капельный путь передачи вируса. Более чувствительны к коронавирусной инфекции и ФИП кошки с пониженным иммунитетом (ослабленные, истощенные, перенесшие другие заболевания). При скученном содержании (в питомниках, приютах) кошки заболевают чаще. Некоторые породы более предрасположены к заболеванию ФИП (например, британская короткошерстная). Считается, что мутированию коронавируса в вирулентную форму способствует стресс.

Симптомы. Инкубационный период - от нескольких недель до нескольких месяцев. Клинические признаки ФИП разнообразны и варьируют в зависимости от возраста кошек, количества и вирулентности возбудителя, наличия иммунитета. Типичными клиническими признаками у котят возраста до года являются отсутствие аппетита, высокая температура, перитонит, иногда плеврит. В начале заболевания кошка становится апатичной, угнетенной, малоподвижной, меньше ест (но никогда не прекращает есть совсем). Характерный признак ФИП – анорексия и сильное снижение веса. У взрослых кошек различают две формы болезни: экссудативную («влажный» ФИП) и неэкссудативную («сухой» ФИП). «Влажная» форма характеризуется скоплением жидкости («выпота») в брюшной или грудной полости (). При общем похудении и истощении кошки у нее увеличивается живот, отмечается анемия, рвота, диарея, вследствие поражения печени развивается желтуха. «Сухая» форма сопровождается поражением глаз, почек, печени, легких и центральной нервной системы. Наблюдаются клинические признаки ревматизма, менингита: боли в области позвоночника и задних конечностей, нарушение координации движений, закидывание головы, манежные движения, пугливость. При обоих формах болезни наблюдается постепенное, но неуклонное угасание организма, которое через несколько недель (иногда месяцев) оканчивается гибелью животного.

Диагностика основана на результатах анализа на антитела к вирусу или на присутствие вируса, а также на клинической картине заболевания. Однако диагностика ФИП представляет значительные трудности , так как надежного метода, позволяющего дифференцировать вирулентные штаммы коронавируса от авирулентных, не существует. Однозначный диагноз можно поставить только при вскрытии уже погибшей кошки.

Лечение. Специфического лечения от ФИП в настоящее время нет. Для облегчения общего состояния животным делают пункции и удаляют скопившуюся в брюшной или грудной полости жидкость. Назначают лекарства для симптоматического лечения.

Инфекционный перитонит кошек был открыт в 1963 г. Возбудитель, коронавирус, первоначально был назван вирусом инфекционного перитонита кошек. Впоследствии выяснилось, что в крови многих здоровых кошек содержались антитела к этому коронавирусу, и было высказано предположение, что эти кошки были заражены невирулентным коронавирусом, называемым кишечным коронавирусом кошек.

В то время считалось, что кишечный коронавирус обитал исключительно в кишечнике и мог вызвать только легкую диарею у котят; однако последующие исследования показали, что у многих клинически здоровых кошек наблюдалась виремия, следовательно, распространение вируса не ограничивалось только кишечником.

Эпидемиологические исследования показали, что до 10% кошек, имеющих антитела к коронавирусу, заболевают инфекционным перитонитом. Сейчас полагают, что вирулентный вирус инфекционного перитонита возникает в результате мутации кишечного коронавируса кошек в организме отдельных животных, у которых затем может развиться перитонит. Поскольку вирус инфекционного перитонита и кишечный коронавирус больше не могли считаться вирусами разных групп, было принято более широкое название «коронавирус кошек».

Существует множество штаммов этого вируса, сильно различающихся по вирулентности; однако, надежного метода, позволяющего дифференцировать вирулентные штаммы от авирулентных, нет.

Распространение
Многие кошки, особенно содержащиеся группами, заражены коронавирусом.

Процент кошек, реагирующих положительно при серологическом исследовании, составляет:

82% на выставках кошек
53% породистых кошек
28% домашних кошек, содержащихся группами
около 15% домашних кошек, содержащихся поодиночке.

До 10% кошек, инфицированных коронавирусом и живущих большими группами, заболевают инфекционным перитонитом, тогда как у кошек, живущих поодиночке или маленькими устойчивыми группами, это отмечается редко.

Патогенез
Путь передачи коронавируса главным образом алиментарный, через зараженные фекалии. При заражении через ротовую или носовую полость первоначальная репликация вируса происходит в эпителиальных клетках глотки, дыхательного тракта или кишечника. Большинство инфекций на этой стадии протекают бессимптомно. Могут наблюдаться признаки легкого энтерита, но возможна хроническая или тяжелая диарея. Большинство кошек со временем избавляются от вируса, и перитонит не развивается.

У некоторых кошек после репликации вируса в эпителиальных клетках развивается виремия, приводящая к инфекции клеток-мишеней – макрофагов. Вирус-специфичные антитела могут увеличить инфекционность вируса в отношении макрофагов; кошки с вирусным перитонитом часто имеют высокие титры антител против коронавируса. Вирус связывается с антителами, образуя иммунные комплексы, которые накапливаются в стенках мелких кровеносных сосудов, где активируют комплемент и каскады коагуляции, что приводит к иммуноопосредованному васкулиту.

После этого возможны два варианта развития патологии.

Первый - вовлечение в процесс многих кровеносных сосудов приводит к увеличению их проницаемости и скоплению богатого белками выпота в полостях тела и других пространствах, иногда включая сердечную сумку и мошонку. Результатом этого процесса является развитие экссудативного, или «влажного», перитонита.
Второй вариант: при поражении меньшего количества сосудов течение перитонита более хроническое, характеризующееся образованием отдельных пиогранулем в различных тканях тела. В результате развивается неэкссудативная, или «сухая», форма перитонита.

Факторы, определяющие, разовьется ли патология у кошки, зараженной коронавирусом, включают:

штамм – различные штаммы коронавируса различаются по вирулентности
доза – заражение вирусом в более высоких титрах увеличивает риск развития перитонита
стресс – кошки с перитонитом обычно подвергались стрессу за 3–6 недель до заболевания экссудативным инфекционным перитонитом, и за несколько месяцев до заболевания сухим перитонитом
Генетически обусловленная восприимчивость – вероятно, некоторые породы кошек более восприимчивы. Это дает основания предположить, что существует генетическая предрасположенность к развитию инфекционного перитонита, возможно, имеющая отношение к определенным локусам гена главного комплекса гистосовместимости.

Клинические признаки

Анамнез
Экссудативный («влажный») и неэкссудативный («сухой») перитонит протекают с разными симптомами. Так как они отображают разные стороны одного клинического процесса, в некоторых случаях наблюдаются признаки обеих форм.

Данные анамнеза и клинические признаки инфекционного перитонита варьируют в широких пределах, в зависимости от формы заболевания.

В дополнение к обычным анамнестическим данным, для диагностики перитонита существенны некоторые другие факторы:

Не была ли кошка взята от заводчика, из приюта, где содержится много животных, или гостиницы для животных в последние несколько недель или месяцев? В этих ситуациях вероятность заражения коронавирусом больше.
Подвергалась ли кошка стрессу в последние несколько недель, например, не было ли смены жилища или хирургических вмешательств? Экссудативный перитонит, острая форма инфекционного перитонита, обычно развивается в течение 3–6 недель после стрессовой ситуации в жизни кошки
Возраст кошки? Не смотря на то, что перитонитом болеют кошки всех возрастов, 80% заболевших животных моложе 2 лет. Кошки обоих полов одинаково восприимчивы
Порода кошки? Хотя болеют кошки любых пород, породистые кошки составляют гораздо больший процент
Не было ли в анамнезе диареи, кашля или чихания в последние несколько недель? Диарея и легкие респираторные симптомы могут предшествовать развитию обеих форм скоротечного инфекционного перитонита
Не было ли в анамнезе контакта с кошками, особенно из одного помета, больных инфекционным перитонитом?

Клинический осмотр
Экссудативный или «влажный» инфекционный перитонит:

При экссудативном перитоните преобладают следующие признаки:

Асциты и/или выпоты в плевральную полость
Активность и сохраненный аппетит, либо вялость и анорексия
В некоторых случаях легкая лихорадка; имеет склонность к колебаниям
При выпоте в плевральную полость – нарушения дыхания
Потеря веса
При пальпации – увеличенные мезентериальные лимфатические узлы и печень
Распространение патологического процесса с вовлечением других органов брюшной полости (это приводит к появлению симптомов их дисфункции, например, гепатопатии, почечной недостаточности, заболеваний поджелудочной железы)
Поражение центральной нервной системы и глаз – иногда отмечаются при выпотном перитоните, хотя более характерны для сухого.

Неэкссудативный или «сухой» перитонит : клинические признаки часто слабо выражены, неспецифичны и разнообразны; это состояние – одно из самых трудно диагностируемых.

К характерным признакам относятся:

Потеря веса
Отсутствие аппетита

Другие симптомы зависят от того, какие органы поражены, и от степени их поражения. К ним относятся:

Глаза – увеиты, отложения на роговице, помутнение стекловидного тела и опалесценция водянистой влаги, лимфоцитарная инфильтрация сосудов сетчатки, пиогранулема сетчатки
Центральная нервная система – образование пиогранулем и развитие гидроцефалии, приводящие к нистагму, вестибулярным расстройствам (например, наклон головы), судорогам, мозжечковая атаксия, дисфункция черепных нервов, парезы, потеря проприоцептивной чувствительности, недержание мочи или изменения в поведении. Нервные симптомы отмечаются в 10% случаев сухого инфекционного перитонита кошек
Кишечник – утолщение стенки толстой кишки
Мезентериальные лимфатические узлы – увеличены при пальпации
Печень – желтуха и увеличение размеров
Почки – пиогранулемы, могут пальпироваться

Дифференциальный диагноз
В табл. 1 перечислены основные дифференциальные диагнозы экссудативного перитонита и указаны способы дифференциации. Особенно трудно дифференцировать экссудативную форму перитонита от воспалительного лимфоцитарного холангита. Оба заболевания могут протекать с похожими симптомами: потерей веса, анорексией и асцитами. Характер асцитной жидкости одинаковый в обоих случаях (см. рис. 9.4), изменения биохимических свойств сыворотки и гематологических свойств также сходны, хотя у кошек с инфекционным перитонитом больше вероятность развития нерегенеративной анемии. Другие симптомы могут помочь дифференцировать эти заболевания, например, увеиты или плевральный выпот при инфекционном перитоните. Кошки с лимфоцитарным холангитом, как правило, более активны, чем кошки с перитонитом, и иногда отмечается полифагия. При невозможности дифференциации по клиническим признакам может потребоваться биопсия печени.

В табл. 2 перечислены основные дифференциальные диагнозы для сухого перитонита.

Патология	Способ дифференциации от инфекционного перитонита
Кардиомиопатия	Транссудат с низким содержанием белка (менее 35 г/л). Рентгенография может обнаружить увеличенное или круглое сердце. УЗИ сердца
Заболевания печени (лимфоцитарный холангит, холангогепатит, цирроз)	Если асцитная жидкость похожа скорее на измененный транссудат, чем на экссудат, инфекционный перитонит можно исключить. Однако, при некоторых патологиях печени, связанных с обструкцией сосудов после гепатита, выпот может содержать большое количество белка, как при инфекционном перитоните. Можно исследовать асцитную жидкость методом обратной ЦПР; если это невозможно, может потребоваться диагностическая лапаторомия и биопсия. Для диагностики цирроза полезен тест на стимуляцию образования желчных кислот
Опухоли печени	Как и в предыдущем случае, опухоль диагностируется с помощью УЗИ
Гнойные серозиты	Зловонный опалесцирующий экссудат, содержащий бактерии и большие количества лейкоцитов с дегенеративными нейтрофилами
Лимфосаркома	При лимфосаркоме тимуса рентгенография грудной клетки в боковой проекции может обнаружить новообразование краниальнее сердца и, возможно, высокое расположение пищевода. При лимфосаркоме в брюшной полости возможно увеличение органов. При анализе жидкости обычно обнаруживается низкое содержание белка, клеточная популяция состоит скорее из лимфоцитов, чем из нейтрофилов и макрофагов
Беременность	Диагностика пальпацией живота; невозможно откачать жидкость при парацентезе, на рентгенограмме или при УЗИ матки можно рассмотреть котят
Ожирение	Диагностика пальпацией живота, невозможно откачать жидкость при парацентезе, на УЗИ и рентгенограмме нет признаков асцита

Табл. 1: дифференциальные диагнозы при выпотном инфекционном перитоните кошек и методы дифференциации. Состояния перечислены по порядку: наиболее часто встречающиеся ошибочные диагнозы – в начале таблицы, менее частые – в конце

Клинический признак	Дифференциальный диагноз
Хроническая потеря веса, анорексия, незначительная лихорадка	Вирус лейкоза кошек, вирус иммунодефицита кошек, новообразования, гипертиреоидизм у старых кошек
Поражения глаз	Вирус иммунодефицита (увеиты), вирус лейкоза кошек, токсоплазмоз, грибковые инфекции, идиопатические заболевания
	Холангиогепатит, Н emobartinella felis , обструкция желчевыводящих путей, аутоиммунная гемолитическая анемия
Нервные симптомы	Травма, порто-системные шунты, вирус лейкоза кошек, вирус иммунодефицита кошек, токсоплазмоз, новообразования, губкообразная энцефалопатия кошек

Табл. 2: Дифференциальные диагнозы для разнообразных клинических проявлений при сухом инфекционном перитоните кошек

Диагностика
Вопреки многим утверждениям, простых методов диагностики инфекционного перитонита у живого животного, кроме биопсии и гистологии пораженных тканей, не существует. Многие имеющиеся тест-системы выявляют заражение коронавирусом, и обратная ЦПР определяет коронавирус кошек (см. далее).

Ни одним методом нельзя отличить вирулентный штамм коронавируса от авирулентного, хотя некоторые методы позволяют дифференцировать изоляты, полученные в лаборатории. В большинстве случаев диагноз «инфекционный перитонит кошек» (любой формы), поставленный на основании клинических признаков и анамнеза, требует дополнительного исследования несколькими диагностическими методами, по результатам которых, соответствующим друг другу, можно предположить это заболевание.

Эти методы включают:

Клиническую патологию для диагностики поражения органов
Анализ выпота брюшной или грудной полости
Серологические тесты для выявления заражения вирусом
Обратную ЦПР для определения вируса
Гистопатологическое исследование пораженных тканей; это единственный метод, позволяющий поставить окончательный диагноз инфекционного перитонита.

В табл. 3 перечислены разные методы и примеры их использования. В табл. 4 представлены все методы, доступные на данный момент для определения коронавируса и антител к нему, и перечислены клинические ситуации, в которых применяются эти тесты.

Табл. 3: лабораторные методы, использующиеся для диагностики инфекционного перитонита кошек, и материалы, необходимые для исследования каждым методом

Тест определяет	Имеющиеся тест-системы	Клинические ситуации, в которых можно использовать метод
Антитела	Метод иммунофлуоресценции, твердофазный иммуноферментный анализ (например, IDEXX Snap) иммуноиммиграционный экспресс-анализ	Диагностика инфекционного перитонита кошек (в сочетании с другими методами и клиническим осмотром) Проверка кошек, бывших в контакте с больными перитонитом, чтобы определить, может ли он быть инфекционным Проверка перед спариванием Проверка перед подселением кошки к животным, свободным от коронавируса
	Обратная ЦПР	Диагностика экссудативного инфекционного перитонита (для анализа берут выпот) Исследование кошки, бывшей в контакте с больными перитонитом, чтобы выяснить, был ли он инфекционным; требуются повторные исследования Проверка животных в семье на присутствие коронавируса Проверка перед подселением к животным, свободным от коронавируса; требуются повторные исследования
Вирус в тканях	Иммуногистохимия	Постановка окончательного диагноза, особенно при сомнительных результатах гистологии
Патологические изменения	гистопатология	Постановка окончательного диагноза

Табл. 4: список диагностических методов, позволяющих определить контакт с источником инфекции или инфекцию коронавирусом кошек, и клинические ситуации, для которых рекомендуются методы.

Клиническая патология
Изменения биохимии сыворотки зависят от поражения органов и длительности заболевания. Гиперглобулинемия (иногда моноклональная гаммопатия) и увеличенная концентрация α1-кислого гликопротеина отмечаются постоянно (см. ниже). Неспецифические изменения в составе крови могут включать нейтрофилию (часто со сдвигом влево), лимфопению и нерегенеративную анемию. Подобные изменения более характерны для сухого перитонита. Возможны коагулопатии.

Природа перитонеальной жидкости
Анализ жидкости позволяет выявить изменения, характерные для инфекционного перитонита, или исключить его.

Выпот при инфекционном перитоните обычно характеризуется следующими свойствами:

Обычно соломенного цвета и всегда стерильный
Высокое содержание белка (более 35 г/л), пенится при встряхивании, при стоянии в течение нескольких часов при комнатной температуре могут образовываться сгустки
При соотношении альбумины/глобулины менее 0,4, вероятность того, что это инфекционный перитонит, высокая; более 0,8 это маловероятно; при значении между 0,4 и 0,8 это возможно, но неопределенно
Концентрация α1-кислого гликопротеина более 1500 мг/мл (Дути и др., 1997) характерна для инфекционного перитонита
Общее количество ядерных клеток менее 5000 клеток/мл (в основном нейтрофилы и макрофаги)
При исследовании методом обратной ЦПР реакция положительная (см. далее)

Серологические методы

Серологические методы используются:

для исследования кошек с подозрением на инфекционный перитонит
для исследования кошек, бывших в контакте с кошками, возможно, больными инфекционным перитонитом
по желанию заводчика кошек
для проверки кошек, живущих в доме, на присутствие коронавируса
для проверки кошек перед подселением к другим, свободным от коронавируса

Интерпретация результатов серологических методов может вызывать затруднения, поскольку:

Кошки со сходными клиническими признаками могут случайно дать положительную реакцию, особенно породистые; следовательно, не смотря на то, что высокие титры антител у кошек в сочетании с клиническими признаками характерны для перитонита, это не имеет диагностического значения
Некоторые кошки с экссудативным перитонитом имеют низкие титры антител или реагируют отрицательно, возможно, из-за огромного количества вирусных частиц в организме, в результате чего все антитела оказываются связанными и, следовательно, неспособными связаться с антигенами тест-системы
Некоторые серологические тесты определяют наличие антител, не измеряя титров (например, иммуноиммиграционный экспресс-метод, Snap), в то время как другие (Immunocomb®, иммунофлуоресцентный метод) позволяют определить титры. Результаты, выраженные в титре, удобны для мониторинга отдельных кошек или группы кошек одного владельца на предмет избавления от коронавируса.

Интерпретация результатов серологических тестов у всех кошек

Экссудативный инфекционный перитонит : хотя серологические методы используются для диагностики экссудативного инфекционного перитонита, применять их следует только в случаях, когда клинические признаки, отношение альбумин/глобулин, содержание α1-кислого гликопротеина и цитологические свойства выпота характерны для перитонита. Кошки с экссудативным перитонитом могут реагировать отрицательно, но могут и иметь антитела, в том числе в высоких титрах. Кошки с другими заболеваниями могут иногда иметь антитела к коронавирусу, особенно если в доме есть другие кошки, или если они взяты из приюта или от заводчика в последние 6–12 месяцев.

Сухой инфекционный перитонит : титры антител к коронавирусу, определенные иммунофлуоресцентным методом, обычно равны 640 или выше. Титры менее 160 почти всегда позволяют исключить сухой перитонит. Обнаружение антител у здоровой кошки принимать за раннюю стадию сухого перитонита ошибочно.

Интерпретация результатов серологических тестов у здоровых кошек
Проверка здоровых кошек, бывших в контакте с больными: здоровых кошек, контактировавших с больными инфекционным перитонитом или источниками инфекции, проверяют по одной из двух причин, описанных ниже. В любом случае нужно пояснить владельцу, что кошка с большой вероятностью окажется сероположительной.

Заражаются почти все кошки, контактировавшие с источником инфекции. Это не означает плохого прогноза, так как перитонит развивается менее чем у 10% инфицированных кошек; чаще всего организм освобождается от вируса и животные начинают реагировать отрицательно.

В ситуации, когда владелец собирается завести другую кошку взамен умершей от инфекционного перитонита и хочет знать, распространяет ли вирус кошка, контактировавшая с больной:

Если кошка, контактировавшая с больной, при серологическом исследовании реагирует отрицательно, маловероятно, что она инфицирована, и, следовательно, не распространяет вирус; заводить новую кошку безопасно
Если кошка реагирует положительно (то есть имеет титр антител 1:10 или более), существует 1 шанс из 3, что она распространяет коронавирус, таким образом, заводить другую кошку будет неразумно (за исключением случаев, когда новая кошка имеет антитела, показывающие, что она контактировала с источником инфекции). Кошку нужно исследовать повторно спустя 3–6 месяцев, чтобы установить, снизился ли титр антител. У большинства кошек, освободившихся от вируса, антитела исчезают в период от 3 месяцев до нескольких лет. В идеале, кошек, реагирующих положительно, надо отделять от отрицательно реагирующих кошек, живущих в доме. Как только кошка начинает реагировать отрицательно, ее следует переместить в соответствующую группу во избежание реинфекции от других кошек.

Если владелец хочет знать прогноз для кошки, контактировавшей с источником инфекции:

Если кошка реагирует отрицательно, она, вероятнее всего, не инфицирована и не заболеет инфекционным перитонитом
Если кошка реагирует положительно, она может заболеть перитонитом, но вероятность этого мала (менее 1:10)

Проверка племенных кошек
Заводчики часто просят исследовать животных перед спариванием. В этом случае:

Кошка, реагирующая отрицательно, вероятнее всего, не инфицирована и не выделяет вирус, следовательно, может спариваться с животными, реагирующими отрицательно
Если кошка реагирует положительно, будет разумным найти партнера, также реагирующего положительно, чтобы уменьшить риск заноса заболевания в группу, свободную от вируса. Для предотвращения инфекции котят необходимы изоляция и ранний отъем.

Проверка группы кошек на коронавирус : случайная выборка 3 или 4 кошек, живущих вместе, для исследования покажет, является ли коронавирус эндемичным, поскольку он высоко контагиозен.

Дома, в которых содержится менее 10 кошек или где кошки живут изолированными друг от друга группами по 3 или менее животных, часто в конечном счете избавляются от инфекции. Исследование каждые 6–12 месяцев поможет выяснить, когда это произойдет, так как титр антител падает и больше кошек начинает реагировать отрицательно. Во избежание повторной инфекции рекомендуется отделить отрицательно реагирующих кошек от положительно реагирующих.

Проверка кошки, подселяемой к группе, свободной от коронавируса : в группы, свободные от инфекции, должны вводиться только кошки, реагирующие отрицательно. Кошек, имеющих антитела, можно изолировать и повторно исследовать через каждые 3–6 месяцев, пока результат не станет отрицательным.

Обратная ЦПР
Обратная цепная полимеразная реакция амплифицирует выбранную часть вирусной нуклеиновой кислоты до концентраций, позволяющих ее определить.

Метод чувствителен, но требует строгих мер предосторожности, чтобы избежать контаминации, приводящей к ложноположительным результатам. Некоторые лаборатории утверждают, что имеют тест-системы на основе обратной ЦПР для диагностики инфекционного перитонита, и могут даже предсказать вероятность развития перитонита у здоровой кошки; однако, на момент написания книги, при анализе последовательностей генов нескольких штаммов вируса инфекционного перитонита и кишечного коронавируса кошек мутация, отвечающая за вирулентность, обнаружена не была. Из-за вариабельности генома коронавируса маловероятно, что когда-либо появится тест-система, позволяющая различить вирулентные и невирулентные штаммы (Хорзинек, 1997). Для исследования можно брать фекалии, кровь, слюну или выпот, хотя мониторинг выделения вируса со слюной бесполезен, так как оно прекращается задолго до прекращения выделения с фекалиями.

Обратную ЦПР можно использовать для диагностики инфекционного перитонита:

Присутствие коронавирусной РНК в выпоте является вероятным, но не окончательным признаком инфекционного перитонита
Положительные результаты при исследовании крови методом ЦПР не позволяют поставить диагноз «инфекционный перитонит», так как здоровые кошки или кошки, больные другими заболеваниями, также могут реагировать положительно.
Отрицательный результат, полученный при исследовании крови методом обратной ПЦР, не исключает возможность инфекционного перитонита, так как больные кошки могут реагировать отрицательно.

Обратная ЦПР может использоваться для мониторинга распространения вируса в доме, где проводится контроль над заболеванием.

Кошек можно разделить на 3 типа:

Большинство кошек, инфицированных коронавирусом, некоторое время распространяют вирус, имеют антитела, затем выделение прекращается и антитела пропадают; затем кошки инфицируются повторно и цикл повторяется
Небольшая группа кошек является носителями вируса и распространяет его постоянно
Небольшая группа кошек проявляет устойчивость к распространению вируса

Табл. 5 схема мероприятий по профилактике коронавирусной инфекции у котят:

Подготовка помещения для котят
1. удалите всех кошек и котят за неделю до того, как помещать мать
2. продезинфицируйте помещение раствором гипохлорита в разведении 1:32
3. выделите корзинки для котят, миски для корма и воды специально для этого помещения и продезинфицируйте их раствором гипохлорита
4. поместите в помещение кошку за 1–2 недели до родов

Профилактика непрямого распространения вируса
1. входите в комнату с котятами до посещения помещений с другими кошками
2. мойте руки с дезинфектантом перед входом в комнату для котят
3. надевайте сменную обувь или бахилы при входе в комнату

Ранний отъем и изоляция котят
1. исследуйте кошку на антитела к коронавирусу перед или после окота
2. если титру матери больше нуля, котят следует поместить в отдельную чистую комнату до 5–6 недельного возраста
3. если титр антител матери равен нулю, котят можно оставить с ней до более старшего возраста
4. позаботьтесь о том, чтобы приучить котят в возрасте 2–7 недель, находящихся в изоляции, к человеку

Исследование котят
1. исследуйте котят на антитела к коронавирусу в возрасте старше 10 недель, чтобы убедиться, что они реагируют отрицательно

Общая патология/гистопатология
Серозные поверхности часто покрыты фибринозными наложениями, диаметром 1–2 мм. В отдельных органах могут обнаруживаться крупные гранулемы.

Множественные опухоли и другие инфекции (например, туберкулез) могут протекать со сходными признаками. Печень, сальник и кишечник можно исследовать с помощью биопсии, в то время как ткани глаза и центральной нервной системы доступны только для посмертного исследования.

Гистологическое исследование позволяет поставить окончательный диагноз.

Иммуногистохимия
Следующий метод диагностики в случаях, когда с помощью гистологии ясно идентифицировать инфекционный перитонит не удается

Лечение инфекционного перитонита
Обычно инфекционный перитонит смертелен и ни один метод лечения не показал себя надежным. Следовательно, терапия в основном симптоматическая, включающая восполнение потерь жидкости и питание.

Поскольку инфекционный перитонит является иммуноопосредованным заболеванием, лечение часто направляют на регуляцию иммунного ответа на вирус.

Обычно регуляция иммунного ответа достигается применением иммуносупрессоров или иммуностимуляторов, по отдельности или в сочетании:

иммуносупрсессоры, включая кортикостероиды (например, преднизолон) или циклофосфамид. Имеющиеся в продаже таблетки циклофосфамида (50 мг) не удается дозировать по схеме; имеются импортные таблетки по 25 г

Многие соединения могут иметь неспецифическое иммуностимулирующее, противовоспалительное или антиоксидантное действие, что может быть полезно для лечения инфекционного перитонита; однако, их польза не доказана. К соединениям, возможно, оказывающим благотворное действие при наименьшем вреде, относятся: человеческий α-интерферон, аспирин (салициловая кислота), витамин С (аскорбиновая кислота); витамин В1 (тиамин) и анаболические стероиды.

Прогноз
Прогноз при инфекционном перитоните кошек всегда неблагоприятный, так как исход почти всегда смертельный. Кошки с экссудативным перитонитом могут прожить от нескольких дней до нескольких недель. В некоторых случаях после удаления жидкости в результате лечения развивается сухой перитонит. Кошки с сухим перитонитом при условии лечения могут жить до года, если диагноз был поставлен рано, до развития явной анорексии и нервных симптомов.

Контроль и профилактика

Профилактика инфекции у котят
Коронавирус обычно не проникает через плацентарный барьер, и котята защищены материнскими антителами до 5–6 недельного возраста. Следовательно, в группах, где коронавирус эндемичен, кошек перед окотом надо изолировать от других кошек до достижения котятами возраста 5–6 недель. Потом помет отделяют и держат в изоляции до продажи. Антитела у зараженных котят могут не определяться до 10-недельного возраста, следовательно, исследовать их раньше этого возраста не нужно. На рис. 9.15 дается подробная пошаговая схема изоляции и раннего отъема (Эдди и Джаррет, 1992 г)

Уничтожение коронавируса в местах содержания кошек
При содержании менее 10 кошек в доме вирус в большинстве случаев исчезает спонтанно. Выделение вируса прекращается, и титр антител в конце концов падает до нуля; избавление от инфекции может занять от нескольких месяцев до нескольких лет. Если владельцы хотят избавить своих животных от коронавируса, всех кошек нужно исследовать каждые 3–6 месяцев с помощью надежной тест-системы на основе метода иммунофлуоресценции и/или обратной ЦПР (исследуются фекалии). Нужно разделить кошек на 2 или более групп: реагирующих отрицательно и положительно. Как только кошка перестает реагировать положительно, ее перемещают в «отрицательную» группу. Разделение на стабильные группы по 2–3 животных предпочтительнее. В большинстве случаев все кошки перестанут выделять вирус, так как изоляция положительно реагирующих животных от отрицательно реагирующих разрывает цикл инфекция-иммунитет-потеря иммунитета-повторная инфекция.

Однако, хронические носители инфекции, распространяющие вирус, все же существуют в небольшом количестве. На данный момент способов выявить таких кошек-носителей не существует, кроме изоляции и исследования фекалий методом обратной ЦПР каждый месяц. Если выделение вируса продолжается более 8 месяцев, несмотря на то, что источники инфекции удалены, животное, вероятно, является носителем. На рис. 9.17 дана пошаговая схема избавления животных в доме от коронавируса и поддержания их чистоты.

Уменьшить количество кошек во всех помещениях

Владельцы не должны держать более 6–10 кошек

Кошки должны содержаться стабильными группами до 3–4 животных

В приютах кошки должны содержаться каждая изолированно

По программе по освобождению от коронавируса кошки должны содержаться небольшими группами в соответствии с титром антител или выделением вируса: реагирующие отрицательно или не выделяющие вирус – отдельно от реагирующих положительно или выделяющих вирус

Профилактика инфекционного перитонита у клинически здоровых кошек, зараженных коронавирусом
Специфического способа предотвратить развитие перитонита у инфицированной кошки не существует, но помочь в этом может следующее:

Снижение стресса у кошки: не перемещайте положительно реагирующую кошку в другое жилище, отложите второстепенные хирургические операции до того времени, когда кошка начнет реагировать отрицательно, избегайте отдавать кошку на передержку; на время отпуска владельцам лучше попросить кого-то поухаживать за кошкой в их доме
По возможности, не спаривайте положительно реагирующих кошек: поскольку генетические особенности играют важную роль в том, разовьется или нет перитонит у инфицированной кошки, лучше не вязать кошек, в потомстве которых уже были случаи перитонита. В идеале, кошки, у котят которых развился перитонит, никогда больше не должны использоваться для разведения.
Избегайте препаратов, подавляющих иммунитет, таких, как кортикостероиды, прогестогены.

Вакцинация
На момент написания книги существовала только одна вакцина против коронавируса, доступная в странах Европы. Это модифицированная живая вакцина, чувствительная к изменению температуры; содержит коронавирус, реплицирующийся только в носоглотке при низкой температуре, но не при температуре тела. Принцип действия вакцины – в том, что она индуцирует иммунитет в первой точке воздействия вируса, то есть ротоглотке, таким образом, препятствуя расселению коронавируса по организму. Индуцирует местный (IgA), общий гуморальный (кошки начинают реагировать положительно в серологических тестах) и клеточный иммунитет. Вакцина неэффективна в случаях, когда кошка уже заразилась и у нее начал развиваться инфекционный перитонит. Эффективность вакцины составляет 50–75% (то есть можно ожидать, что из 100 инфицированных коронавирусом кошек перитонит разовьется у 10, но если вакцинировать все 100 животных, заболеют только 2–5). Вакцина лицензирована только для котят старше 16 недель; однако, многие породистые котята могут к этому времени оказаться инфицированными коронавирусом. Очень важно оградить маленьких котят от инфекции содержанием в изоляции и ранним отъемом, а также использованием для разведения наименее восприимчивых кошек.

"Практическое руководство по инфекционным болезням собак и кошек",
Британская Ассоциация ветеринарии мелких домашних животных,
Редакторы:
Ян Рэмси и Брин Теннант

Инфекционный перитонит кошек – системная вирусная болезнь (Coronavirus) , которая поражает многие ткани организма. Определены две формы болезни: влажная и сухая. При влажной форме, воспалительная жидкость аккумулируется в абдоминальной полости. При сухой форме, вирус атакует различные органы, такие как почки и селезенка. Нет лечения для данной болезни и почти всегда исход фатальный. ИПК наиболее часто диагностируется у котят и взрослых кошек до 3х лет. Кошки в питомниках или в домах с несколькими животными имеют наивысший риск развития болезни.

Дополнительная информация
ИПК системная вирусная болезнь, характеризующаяся скрытым началом, периодической неконтролируемой лихорадкой, пиогранулематозной реакцией, аккумулирование экссудата в полостях тела, высокой смертностью.

Патофизиология
Вирус ИПК реплицируется локально в эпителиальных клетках респираторного тракта или орофарингса. Вирусные тела начинают вырабатываться, и вирус поглощается макрофагами. Вирус транспортируется макрофагами/моноцитами по организму, локализуясь в стенках различных вен и периваскулярного пространства. Локальная периваскулярная репликация вируса и последующая пиогранулематозная реакция со стороны тканей образует характерную картину поражения при ИПК.

Поражаемые системы

Мультисистемная – пиогранулематозные или гранулематозные повреждения происходит в сальнике, на серозных оболочках органов брюшной полости, таких как печень, почки, кишечник, в абдоминальных лимфатических узлах, и подслизистом слое кишечника.
Респираторная – поражения на поверхности легких, плевральный выпот при влажной форме ИПК.
Нервная – васкулярные поражения проявляются на всем протяжении ЦНС, особенно, на оболочках
Офтальмологическая – повреждения могут проявляться увеитом и хореоретинитом.

Генетическая предрасположенность
Нет.

Распространенность
Распространенность антител против коронавируса кошек (вируса ИПК, КВК, FCoV) высокая в большинстве популяций, особенно там, где много кошек содержится совместно. Инциденты клинического проявления болезни низки в большинстве популяций, особенно у кошек, которые содержаться одни. Из-за трудности в диагностике, контроле и профилактики вспышка ИПК в гостиницах для кошек может стать катастрофой.

Признаки инфекционного,вирусного перитонита кошек (ИПК, ВИПК, FIP)

Домашние кошки и экзотические кошки предрасположены к инфекции ВИПК.

Породная предрасположенность
Некоторые семьи или линии кошек проявляют большую предрасположенность к развитию клинической формы болезни после инфицирования ВИПК. Среди экзотических кошек, гепарды особенно предрасположены к развитию фатального ИПК.

Средний возраст и диапазон
Высокая распространенность ВИПК проявляется у котят в 3 мес. до 3 лет. Распространенность снижается после достижения кошкой 3 лет.

Половая предрасположенность
Нет

Анамнез
Общие комментарии
Широкий диапазон признаков может проявиться в зависимости от вирулентности и патогенности штамма вируса вовлеченного в процесс, эффективности иммунной системы хозяина и поражаемых систем. Различают две классические формы болезни, влажная, с выпотом экссудатов в полости тела и сухая, которая поражает различные органы.
Анамнез

Имеется скрытое начало
Постепенное истощение снижение аппетита
Остановка в росте
Постепенное увеличение объема живота, развитие водянки, асцита, пузатый вид животного
Постоянная лихорадка без ответа на антибиотики

Результаты физикального обследования

Депрессия, низкорослость
Плохое общее состояние – потеря веса и плохое состояние шерсти
Абдоминальные и плевральные выпоты
Пальпация может выявить абдоминальные массы (гранулемы или пиогранулемы) на сальнике, на поверхности внутренних органов, особенно почек, и на кишечных стенках. Мезентеральные лимфатические узлы могут быть увеличены.
Глаза: , изменение цвета радужки, неправильная форма зрачка.
Неврологические признаки могут включать различные варианты.

Причины
ВИПК вызывается одним из двух типов коронавируса кошачьих. Большинство инфекций, возможно 85%,вызываются типом 1 вируса (FCoV-1), остальные типом 2 (FCoV-2). Очень важно проводить различие между двумя биотипами вируса, менее вирулентные и авирулентные кишечные виды вируса (кишечный коронавирус кошек или КККВ) и вирулентными видами, которые приводят к возникновению ВИПК. В действительности, ВВВК и в ВИПК могут становиться как типом 1 так и типом 2. В каждом типе есть спектр вирулентности из авирулентных вирусов, которые образуют асимптоматические инфекции и фатальное поражение ВИПК.

Факторы риска

Вступление FCoV-антителпозитивныной кошки в популяцию FCoV-антителнегативных кошек (незащищенных антителами против ВИПК)
Кошки, содержащиеся группами

Диагностика ВИПК

Влажная форма ВИПК может быть легко выявлена клиническим путем, тогда как сухую форму сложно точно диагностировать. Нет ни одного лабораторного теста для диагностики ВИПК, потому что болезнь вариабельно от случая к случаю.

Дифференциальный диагноз

Лихорадка неизвестного происхождения. Этот диагноз можно поставить когда отвергнуты все другие возможные причины гипертермии.
Болезни сердца вызывающие плевральный выпот. Это выпот буде иметь низкую относительную плотность и количество клеток в сравнении с высокой плотностью и огромным содержанием клеток при ВИПК выпоте.
Повреждения при лимфоме, особенно почек, могут быть сходными с ВИПК при пальпации. Опухоли ЦНС могут проявлять признаки подобные тем, что и при ВИПК. Большинство кошек с позитивным тестом на ВИПК-антиген. У кошек с негативным результатом теста, биопсия мест поражения (при возможности) должны подвергаться гистопатологическому или иммунохимическому анализу на ВИПК-антиген.
Респираторные болезни, вызываемые калицивирусом кошек и герпесвирусом кошек, хламидиями или различными бактериями.
Панстеатит (болезнь желтого жира). Боль при пальпации живота, и диета только из рыбы.
Панлейкопения, вызывающая энтерит. Количество лейкоцитов должно быть низким.
Диагноз
Это заболевание подозревается при отсутствии ответа лихорадки на введение антибиотиков, наличию экссудатов в грудной и перитонеальной полостях без явных инфекционных агентов, гиперглобулинемии и повышенным содержанием белка в выпоте при влажной форме.
Сердечная недостаточность, лимфосаркома и разрыв лимфатических протоков и т.п. болезни с признаками выпота в грудную и брюшную полости должны быть внимательно учтены и проверены, как и лейкемия кошек, вирусный иммунодефицит кошек и панлейкопения кошек.
По различным причинам изоляция вируса не практична.
Серологические процедуры: некоторые диагностические лаборатории не могут проводить тесты на ВИПК из-за сложности интерпретации результатов. ВИПК позитивный результат иммунофлуорересцентного анализа (ИФА) говорит лишь только о том, что животное имело контакт с вирусом, не подтверждая наличия вируса. Однако, существует насколько свидетельств что многие серологически позитивные кошки избавились от коронавируса возможно в респираторном или желудочно-кишечном тракте. Положительные тесты с использованием ИФА или ELISA не дают гарантированного диагноза на ВИПК.
Позитивный результат теста ИФА на ВИПК (титр 1:50 до 1:6000) вместе с клиническими признаками ВИПК говорит о верном проявлении ВИПК. Хотя и необычно, но некоторые кошки с проявлением признаков ВИПК имеют отрицательный результат на серологическое исследование.

ИФА (иммуноферментный анализ)предпочитается многими диагностическими лабораториями, чем ELISA.

Диагностические наборы для ИФА и ELISA диагностики доступны для использования на коронавирус кошек, но результаты необходимо интерпретировать с осторожностью.
Общий белок, определяемый электрофорезом, заметно повышен.
Позитивный результат окрашивания образцов (из легких, печени, почек, лимфатических узлов брыжейки и плевры) специфическими флуоресцирующими антителами на ВИПК считается окончательным диагнозом. Кишечный коронавирус перекрестно реагирует на тест к ВИПК.
При жизни у животных в крови можно обнаружить тяжелую анемию, нейтрофилию и лейкопению.
Так же коммерчески доступно ПРЦ исследование для оказания помощи в идентификации вируса в различных тканях.

Анализы крови и мочи

Кошки с ВИПК имеют тенденцию к развитию лейкопении на ранней стадии инфекции, но позднее развивается лейкоцитоз с нейтрофилией и лимфопенией.
Может выявляться анемия различной степени тяжести – от средней до тяжелой.
Обычно заметно повышение уровня общего плазменного глобулина.
Часто присутствует и гипербилирубиурия.

Лабораторные тесты

Тест на сывороточные антитела определяют антитела против коронавирусов кошек. Позитивный результат не является диагностическим, и предпочтительнее показывает предыдущую инфекцию ВИПК. Корреляция между верхним значением титра и потенциального подтверждения ВИПК не велико.
ПЦР (полимеразная цепная реакция) позволяет определить вирусный антиген. Точность позитивного теста коррелирует с клиническим проявлением болезни.
Иммуногистохимическое исследование (иммунопероксидазой) доступно для определения ВИПК антигена в определенных клетках в гистопатологических образцах кошек при посмертном исследовании с фатальной формой болезни и образцах биопсии. Это тест является прекрасным для подтверждения ВИПК.

Визуальные методы диагностики обычно не требуются, но могут помочь в обнаружении абдоминально и плеврального выпота, а также пиогранулематозных повреждений.
Жидкость при влажной форме ВИПК также может обнаруживаться и в брюшной полости (асцит).
УЗИ дает дополнительную информацию, которую нельзя получить при помощи рентгенографии. В данном случае, увеличенные лимфатические узлы в центре кишечника.

Рентгенограмма: 1 . Диффузное затемнение в нижней части грудной клетки из-за плеврального выпота, из-за чего границы сердца 2 не видны, а легкие 4 сдвинуты к позвоночнику и мало вентилируются, 3 – трахея, 5 – печень, 6 – желудок, 7 – кишечник

Другие диагностические процедуры

Жидкость, полученная из грудной и брюшной полостей, бледного или соломенного цвета, тягучая, часто с вкраплениями фибрина, а после отстаивания в ней оседают сгустки. Специфическая плотность такой жидкости обычно высокая (1.030-1.040).
Лапароскопия может быть полезной для обнаружения специфических повреждений в брюшной полости и получения образцов тканей для гистопатологического и иммунохимического подтверждения.
Диагностическая лапаротомия может выявить истину, если есть трудность в постановке диагноза и если лапароскопия недоступна.

Внешние и гистопатологические изменения

Мониторинг за пациентом
У кошки с ВИПК необходимо контролировать скопление экссудата в плевральной полости.

Профилактика

Имеется в продаже MLV интраназальная вакцина против ВИПК. Однако, эффективность дано вакцины низкая, следовательно на ней нельзя целиком полагаться в вопросе контроля ВИПК.
Главный способ передачи ВИПК – от кошек асимптоматических вирусоносителей котятам в возрасте 5-7 недель, когда колостральный иммунитет начнет ослабевать. Следовательно, ранний отъем котят в возрасте 4-5 недель с выращиванием котят изолированных от прямого контакта с другими кошками включая матерей, прервет цикл передачи вируса от матери к потомству.
Обычная дезинфекция мест обитания кошки и средств по уходу и кормлению быстро инактивирует вирус и уменьшает риск передачи от кошки к кошке.
Только FCoV- антител негативные кошки должны вводиться в питомник или колонию кошек как гарантия свободы организма от вируса. Вакцинация может делать кошек антител-позитивными и может затруднить контроль вируса в популяции.

Возможные осложнения
При плевральном выпоте необходим торакоцентез, как средство лечения.

Ожидаемый курс и прогноз
ВИПК может запустить проявление клинических признаков в течение нескольких дней или нескольких месяцев. Прогноз смертельный после проявления типичных признаков ВИПК инфекции, достигая 100% смертности.

Клинические признаки, типично проявляющиеся при данной болезни.

Снижения вольтажа на ЭКГ, затухание комплексов и низкая амплитуда.
Приглушение сердечных тонов
Тахикардия, учащение пульса
Растяжение брюшной полости
Анорексия, сокращение или потеря аппетита
Асцит
Снижение объема фекалий, запор, отсутствие фекалий
Диарея
Дисфагия
Гепатоспленомегалия, спленомегалия, гепатомегалия
Полифагия, избыточный аппетит
Аномальное проприорецептивное позиционирование
Атаксия, дискоординация, падание
Цианоз
Дегидратация
Дисметрия, гиперметрия, гипометрия
Непереносимость физической нагрузки
Лихорадка
Хромота передних конечностей
Генерализованная диагностика
Генерализованная слабость
Слабость в области головы, шеи, парез, паралич
Гемипарез
Хромота задних конечностей
Массы в брюшной полости
Недостаток роста
Лимфаденопатия
Опистотонус
Бледность кожи и слизистых оболочек
Полидипсия
Припухлость в области препуция, семенников, пениса, мошонки
Тетрапарез, слабость, паралич 4х конечностей
Дрожь, тремор, фасцикуляция
Потеря веса
Аномальное поведение, агрессия, изменение привычек
Аномальные рефлексы передних конечностей, усиление или уменьшение
Аномальные рефлексы задних конечностей, усиление или уменьшение
Кружение
Дезориентация, потеря памяти
Тупоумие, депрессия, летаргия
Делириум, бред, мания, возбуждение
Гипоэстезия передних конечностей, анестезия
Наклон головы

Гиперестезия, гиперактивность
Гипертония мышц, миотония
Гипотония мышц
Пропульсия, бесцельное брожение
Судороги или обмороки, конвульсии, коллапс
Тремор
Аномальный рефлекс зрачка на свет
Аномальная рефлективность сетчатки
Аномальный размер сосудов сетчатки
Анизокория
Блефароспазм
Слепота
Хемоз, отек конъюнктивы, роговицы
Аномальная васкуляризация конъюнктивы и роговицы
Краснота конъюнктивы, роговицы
Отек роговицы
Паннус
Гифема, «черный глаз»
Гипопион
Слезотечение
Миоз, сокращение зрачка
Мидриаз, расширение зрачка
Нистагм
Помутнение стекловидного тела
Атрофия зрительного нерва, сокращение размеров зрительного нерва
Гнойные истечения из глаз
Отслоение клетчатки
Складки и бугры на сетчатки
Кровоизлияния сетчатки
Синехии
Боль спины
Боль шеи
Боль от внешнего давления на брюшную полость
Аномальный размер семенников
Кашель
Притухание легочных звуков
Диспноэ
Тахипноэ
Слизистые носовые истечения, серозные, водянистые
Гнойные носовые истечения
Грубость и неопрятность шерсти
Глюкозурия
Кетонурия
Полиурия

Лечение

В зависимости от тяжести протекания болезни животное должно проходить лечение либо стационарно или амбулаторно, желания и возможности владельцев обеспечить хорошее поддерживающее лечение.

Активность
Активность животного необходимо сократить для уменьшения распространения вируса к другим кошкам.

Диета
Анорексия и потеря веса – лавные проблемы при ВИПК. Любая диета, которая побудит животное к приему пищи, приветствуется.

Обучение владельцев
Обсудите различные аспекты ВИПК. Включая фатальный прогноз при окончальтеной постановке диагноза.

Хирургические аспекты
Нет

Лекарственные препараты

Нет препаратов для эффективного лечение ВИПК. Кошки с генерализованной инфекцией ВИПК почти всегда погибают.
Иммуносупрессивные препараты, такие как преднизолон и циклофосфамид применяются с ограниченным успехом. Кортикостероиды как субконъюнктивальные инъекции эффективны только при офтальмологическом проявлении болезни.
Интерфероны, хотя и эффективны in vitro, имеют ограниченный успех в лечении ВИПК. Рекомбинантный интерферон по оценкам имел некоторый успех в лечении ВИПК в Японии.
Антибиотики не эффективны, поскольку вторичные бактериальные инфекции не являются частью клинического проявления болезни.

Противопоказания
Нет

Предостережения
Нет

Возможные взаимодействия
Нет

Альтернативные препараты
Нет эффективных противовирусных лекарств против ВИПК.

Прогноз
ВИПК проходит клиническое проявление в течение нескольких дней до нескольких месяцев. Прогноз смертельный при проявлении характерных клинических признаков, смертность 100%.

Ключевые слова: влажная форма кошачьего инфекционного перитонита, фосфорилированные полипренолы, FIP

Сокращения: АлАТ - аланинаминотрансфераза, АсАТ - аспартатаминотрансфераза, АТФ - аденозинтрифосфат, в/в - внутривенно, в/м - внутримышечно, ГГТ - гамма-глутамилтранспептидаза, ГЛДГ - глутаматдегидрогеназа, ИЛ - интерлейкин, ИФН - интерферон, ЛДГ - лактатдегидрогеназа, МЕ - международная единица, п/к - подкожно, ПЦР - полимеразная цепная реакция, СДГ - сорбитолдегидрогеназа, СОЭ - скорость оседания эритроцитов, УЗИ - ультразвуковое исследование, ЧСС - частота сердечных сокращений, ЩФ - щелочная фосфатаза, ЭКГ - электрокардиография, ЭОС - электрическая ось сердца, FIP - feline infectious peritonitis (кошачий инфекционный перитонит), fL - фемтолитр, PI - рolyprenyl immunostimulant (иммуномодулятор на основе фосфорилированных полипренолов шелковицы)

Несмотря на значительный прогресс в ветеринарной медицине, FIP остается одним из самых загадочных, опасных и неизлечимых заболеваний. Ранее в редакционной статье сообщалось о выступлении доктора Альфреда Лежандра на состоявшемся в 2011 г 33-м ежегодном симпозиуме Winn Feline Foundation, посвященном проблеме лечения FIP. В докладе речь шла об особенностях и перспективах применения PI в качестве единственного средства этиотропной терапии сухой формы FIP. Всего PI применяли при лечении 102 кошек с сухой формой FIP, причем почти 20 % пациентов продолжают жить более года после начала лечения. У них отмечено улучшение общего состояния и качества жизни. В нашей стране также делались попытки терапии FIP при использовании в качестве этиотропных средств фосфорилированных полипренолов различного происхождения - фоспренила и гамапрена . В настоящей статье описаны случаи лечения влажной формы FIP с использованием оригинальной комплексной методики, разработанной ветеринарным врачом И.О. Переслегиной.

Описание клинических случаев

Клинический случай № 1 . Осенью 2011 г. на прием поступил пациент - кот Персик, возраст 1 год, порода русская голубая. Жалобы владельцев: кота привезли с дачи, через две недели заметили, что он худеет. Поноса нет, аппетит сохранен. Были отмечены судороги, кот временами задыхается.

Клинические исследования . При пальпации установлено: живот увеличен, при подъеме за передние лапы жидкость переливается вниз, что придает животу грушевидную форму. Отмечена тахикардия (пульс 140-152 уд/мин), тоны сердца жесткие, аритмия.

При ЭКГ определен эктопический нерегулярный ритм; ЧСС: среднее значение - 209 уд/мин, максимальное - 230 уд/мин, минимальное - 187 уд/мин; отклонение ЭОС влево, блокада левой ножки пучка Гиса, гипертрофия левого предсердия.

При УЗИ обнаружено: скопление в брюшной полости 35-45 мл жидкости, структура печени неоднородная, повышенной зернистости, эхогенность L = 82...85 (норма 65...68), печень выступает за край реберной дуги (увеличена). Края печени ровные, острые. Желчный пузырь в форме песочных часов (с перетяжкой в середине), умеренно наполнен, осадка в просвете нет. Поджелудочная железа увеличена (в норме не удается визуализировать), уплотнена, структура нарушена. Почки без выраженных изменений. Мочевой пузырь наполнен, стенки тонкие, в просвете мелкие эхогенные образования, не отбрасывающие акустической тени.

Кровь из вены отдали на клинический и биохимический анализы (табл. 1). Выявлено резкое увеличение уровня глобулинов, драматическое снижение соотношения альбумин/глобулин на фоне умеренной анемии и гипербилирубинемии. Отмечено существенное повышение активности ферментов СДГ, ГЛДГ, АсАТ, АлАТ, ГГТ, ЛДГ и ЩФ. Кроме того, кровь и выпотную жидкость исследовали на FIP с помощью метода ПЦР (наличие коронавируса FIP подтвердилось в обоих случаях).

Поставлен предварительный диагноз - влажная форма FIP.

Терапия . Коту медленно промыли кишечник отваром ромашки, затем ввели per rectum 5 мл фоспренила (глубоко, на 8 см), подогретого до 40°С. Через 2 ч процедуру повторили. Затем дали еще 3 мл теплого фоспренила per os и продолжали давать его каждые 2 ч в течение ночи.

На следующий день схема терапии была такова: ветранквил - 0,3 мл в/м, фоспренил - 1,5 мл в/м, гептрал - 1,5 мл в/м; АТФ - 0,4 мл (на растворе Рингера) в/в, хлорид кальция - 0,5 мл (на физрастворе) в/в, тиосульфат натрия - 1,0 мл (на физрастворе) в/в, траумель - давали каждый час per os по 1,0 мл, фосфор гомаккорд 1,0 мл в/в; пумпан 5 капель 4 раза в день (в водном растворе) per os.

На 3-й день: ветранквил 0,3 мл в/м, панангин 0,8 мл в/в, рибоксин 1,0 мл в/в, АТФ 0,4 мл в/в, раствор Рингера 50,0 мл в/в. В брюшину ввели 20,0 мл физраствора (катетер расположили с левой стороны от белой линии, отступив 2-3 см от ребра), затем в течение 10-15 мин кота аккуратно переворачивали с бока на бок и массировали ему живот. Откачанная жидкость была характерна для влажной формы FIP: соломенного цвета, без запаха, достаточно вязкая, сильно пенящаяся, слегка опалесцирующая, с белыми хлопьями; общий объем жидкости (учитывая введенный физраствор) - около 65 мл. Сразу после этого в брюшину с помощью 2 разных шприцов были введены теплые (40°С) растворы по 20 мл: фоспренил с физраствором (10:10) и диоксидин 0,5% с физраствором (10:10). В вену дополнительно инъецировали еще 2 мл траумеля. Поставили клизму с фоспренилом, дополнительно в/в ввели метронидазол, в/м бициллин-3, в/м гептрал, фуросемид 0,3 мл в/м. Траумель назначали 4 раза в день по 1,0 мл п/к.

После окончания манипуляций пациент чувствовал себя нормально, через 1 ч даже проявил некоторую активность (поиграл).

В течение двух следующих дней пациента лечили по схеме:

утро (все препараты давали в тех же дозировках, что накануне) - АТФ в/в, траумель п/к, ветранквил в/м, панангин в/в, рибоксин в/в, гептрал в/м, фосфор гомаккорд п/к, тиосульфат натрия в/в, контрикал 5000 ед. в/в, пумпан 5 капель 3 раза в день, фоспренил 3,0 мл per os 3 раза в день, фоспренил в клизме после ромашки (теплый) 5,0 мл;

вечер - гамавит 2,0 мл в/в, траумель 1,0 мл п/к, гептрал 1,5 мл в/м, маннитол 10,0 мл в/в, фоспренил в клизме (теплый) 5,0 мл.

Состояние пациента было стабильным, аппетит сохранен, температура 39...39,3°С.

На третий день в брюшной полости снова скопилась жидкость. Повторили процедуру с проколом брюшной полости. Объем асцита уменьшился до 40 мл вместе с физраствором. Манипуляции повторены.

В схему лечения добавили кардус и берберис (по 1,0 мл п/к). Судороги прекратились. Фосфор гомаккорд назначен 1 раз в три дня по 1,0 мл п/к. Живот уменьшился в объеме, при пальпации жидкость не выявлялась. Кот активно питался. Тиосульфат натрия отменен, доза маннитола снижена до 5,0 мл (очень активное мочеотделение).

К вечеру четвертого дня отмечено: жидкости в брюшной полости осталось всего около 20 мл по оценкам УЗИ. Ввели 10 мл физиологического раствора, вышло чуть больше 20 мл. Жидкость намного светлее, хлопьев нет. Пенилась намного меньше, вязкость также уменьшилась. Введен теплый фоспренил - 10 мл.

Терапия на следующей неделе включала в себя АТФ 0,4 мл в/в 7 дней; фоспренил 3,0 мл per os 3 раза в день; фоспренил 5,0 мл в клизме 1 раз в день (теплый); затем наринэ-форте (согрет в руке) 3,0 мл через 1 ч в клизме; рибоксин 1 мл 2 раза в день в/в; панангин 1, 5 мл в/в 1 раз в день; фосфор гомаккорд 1,0 мл п/к 1 раз в день (3 дня); мукоза композитум 1,0 мл п/к через день (2 недели); берберис 1,0 мл п/к 3 раза в неделю; хелидониум 1,0 мл п/к 3 раза в неделю; гамавит 1 мл п/к 2 раза в день (до 10 дней); пумпан 5 капель 3 раз в день 1 мес; бициллин 3600 тыс. ед.; контрикал 5 тыс. ед. на физрастворе (довести до 10 инъекций в/в); траумель по 1/2 табл. 2 раза в день натощак.

Через неделю сделаны повторные анализы крови (см. табл. 1): показатели, в том числе СОЭ, нормализовались, содержание гемоглобина увеличилось. Асцитная жидкость в брюшной полости отсутствовала, пациент чувствовал себя хорошо.

Данные на начало 2013 г.: кот активен и хорошо себя чувствует. Очередной анализ крови сделан 17.01.2013, то есть через 15 мес после постановки диагноза. Как видно из представленных в таблице 1 данных, практически все показатели находятся в пределах нормы.

1.Данные клинического и биохимического анализов крови кота Персика (клинический случай №1)
Параметр	Данные пациента			Норма
Параметр	При поступлении	Через неделю	Через 15 месяцев	Норма
Клинический анализ
Лейкоциты, тыс./мкл	27,8	17,1	9,4	5,5...19,5
Эритроциты, млн/мкл	4,3	7,07	7,1	6,6...9,4
Гемоглобин, г/л	76	110	83	80...150
Гематокрит, %	22,1	51,5	33,5	30...45
Тромбоциты, 10 9 /л	-	455	221	150...400
СОЭ, мм/ч	15,7	5,5	2,5	2,5...3,5
	-	72,8	47,3	41...56,2
	-	15,5	11,7	11...17
Средняя концентрация гемоглобина в эритроците, Г/дл	-	21,3	24,7	19,5...34,8
Анизоцитоз эритроцитов, %	-	9,2	7,5	8,3 ±0,87
Лейкограмма, %: базофилы эозинофилы миелоциты юные палочкоядерные сегментоядерные лимфоциты моноциты	0 5 0 1 8 51 32 3	0 3 0 0 9 68 19 1	0 5 0 1 7 48 37 2	0...1 2...8 0 0...1 3...9 40...68 36...51 1...5
Биохимический анализ
Общий белок, г/л	98	-	78,8	59...78
Альбумин, г/л	40	-	41,5	34...40
Глобулин, г/л	89	-	-	25...37
Альбумин/глобулин	0,44	-	-	0,7...1,9
Глюкоза, ммоль/л	8	-	1,98	3,33...4,4
Бикарбонат, ммоль/л	19	-	23,7	18,1...24,5
Щелочной резерв, об% СО 2	54	-	51,3	46...51
СДГ, МЕ/л	11	-	3,8	3,1...7,6
ГЛДГ, МЕ/л	234	-	101	75...230
АсАТ, МЕ/л	51,5	-	41,5	12...40
АлАТ, МЕ/л	86,7	-	74,8	28...76
Коэффициент Ритиса	0,59	-	0,6	0,6 ± 0,2
ЩФ, МЕ/л	92	-	87	0...62
ГГТ, МЕ/л	11	-	15,3	2,5 10,5
ЛДГ, МЕ/л	212	-	103	до 193
Альфа-амилаза, МЕ/л	2200	-	1710	до 1650
Аммиак, ммоль/л	19,0	-	40,2	15...40
Креатинин, мкмоль/л	140	-	45	44...138
Мочевина, ммоль/л	4,1	-	3,2	5...10
Натрий, ммоль/л	201	-	195	183...196
Кальций, ммоль/л	3,0	-	2,1	1,79...2,84
Железо, мкмоль/л	3,8	-	5,12	3,9...12,7
Калий, ммоль/л	4,4	-	5,75	4,6...6,1
Хлориды, ммоль/л	121	-	110	102...117
Медь, мкмоль/л	16,4	-	12,3	12...14
Цинк, мкмоль/л	25,3	-	23,7	11...24
Магний, ммоль/л	0,9	-	1,03	1,03...1,42
Фосфор, ммоль/л	1,45	-	1,12	0,97...1,45
Бета-липопротеиды,10 3 г/л	299	-	230	250...280
Холестерин, ммоль/л	10,1	-	-	2,88...9,23
Липаза, МЕ/л	402	-	104	0...375
Триглицериды, ммоль/л	1,02	-	-	0,24...0,98
Билирубин, мкмоль/л: общий конъюгированный неконъюгированный	3,99 0,3 3,69	-	4,73 0,31 4,42	0...6,84 0...1,71 0...5,13

Клинический случай № 2. В сентябре 2008 г. на прием поступила кошка Крыся, метис, возраст 6 мес. По данным анамнеза: кошку привезли из дома отдыха на Украине, где подобрали бездомной. Начала «пухнуть» через 2 недели после приезда в Москву. Владельцы наблюдали понос, который прошел после приема ветома. Пьет мало, играет, для дегельминтизации давали мильбемакс.

Клинические исследования . При осмотре установлено: живот увеличен, круглый. Слизистые оболочки глаз бледные, в ротовой полости цианотичные, температура 39,4°С, аппетит сохранен. При пальпации живота выявлена флюктуация.

Посредством УЗИ в брюшной полости обнаружено значительное количество жидкости (рис. а). Печень не выступает за край реберной дуги, уменьшена в размерах. Структура печени крупнозернистая с диффузной эхонеоднородностью. Эхогенность паренхимы печени L= 45...50.

При клиническом анализе крови отмечены снижение гематокрита, умеренная анемия (табл. 2): при биохимическом анализе - повышение содержания общего белка, глобулина, мочевины, активности АсАТ, АлАТ, ЩФ, ГГТ, а также резкое снижение соотношения альбумин/глобулин.

В сочетании с клиническими признаками, результаты УЗИ, анализов крови и выпотной жидкости послужили основанием для постановки предварительного диагноза влажной формы FIP.

Терапия . Была назначена терапия, аналогичная той, что в описанном выше клиническом случае.

Повторный прием состоялся 6 октября 2008 г. При УЗИ отмечены такие признаки: печень размером 7,5 см, незначительно выходит за край реберной дуги, однородной эхоструктуры, крупнозернистая, сосуды переполнены кровью. Контур ровный, острый. В брюшной полости небольшое количество жидкости (рис. б). Перистальтика кишечника сохранена.

25 декабря повторный прием - состояние пациента нормализовалось, визуально кошка клинически здорова. Взяты повторные анализы (см. табл. 2).

Рис. Сонограммы кошки Крыси:

а - на первом приеме 22.09.2008. В брюшной полости значительное количество жидкости;
б - на приеме 06.11.2008. В брюшной полости небольшое количество жидкости; Перистальтика кишечника сохранена;
в - на приеме 22.10.2008. Жидкости в брюшной полости практически не осталось

2.Данные клинического и биохимического анализов крови кошки Крыси (клинический случай №2)
Параметр	Данные пациента			Норма
Параметр	22.09.2008	22.10.2008	25.12.2008	Норма
Клинический анализ
Лейкоциты, тыс./мкл	19	40,9	33,1	5,5...19,5
Эритроциты, млн/мкл	4,1	4,6	5,0	6,6...9,4
Гемоглобин, г/л	-	41	60	80...150
Гематокрит, %	29	23,1	30,0	30...45
Средний объем эритроцитов, fL	-	57,4	54,9	41...56,2
Среднее содержание гемоглобина в эритроците, пг	-	8	10	11...17
Биохимический анализ
Общий белок, г/л	85	82	81	59...78
Альбумин, г/л	20	21	27	34...40
Глобулин, г/л	62	61	54	25...37
Альбумин/глобулин	0,32	0,35	0,5	0,7...1,9
Глюкоза, ммоль/л	-	3,8	4,0	3,33...4,4
Бикарбонат, ммоль/л	-	18	18	18,1...24,5
Щелочной резерв, об% СО 2	-	45	46	46...51
ГЛДГ, МЕ/л	-	241	215	75...230
АсАТ, МЕ/л	52	68	49	12...40
АлАТ, МЕ/л	87	92	74	28...76
Коэффициент Ритиса	0,59	0,73	0,66	0,6±02
ЩФ, МЕ/л	79,8	54	48	0...62
ГГТ, МЕ/л	10,2	8,9	8,1	2,5...10,5
ЛДГ, МЕ/л	-	60,8	61,2	до 193
Альфа-амилаза, МЕ/л	-	1570	1230	до 1650
Аммиак, ммоль/л	-	19,8	18,3	15...40
Креатинин, мкмоль/л	-	131	110	44...138
Мочевина, ммоль/л	6,0	8,4	3,2	5...10
Натрий, ммоль/л	-	160	151	183...196
Кальций, ммоль/л	-	1,4	1,65	1,79...2,84
Калий, ммоль/л	-	3,3	4,8	4,6...6,1
Хлориды, ммоль/л	-	129	118	102...117
Медь, мкмоль/л	-	16,9	14,1	12...14
Цинк, мкмоль/л	-	29,2	26,4	11...24
Магний, ммоль/л	-	0,54	0,70	1,03...1,42
Фосфор, ммоль/л	-	2,07	2,07	0,97...1,45
Липаза, МЕ/л	-	320	320	0...375
Билирубин, мкмоль/л: общий конъюгированный неконъюгированный	-	7,9 2,38 5,52	6,8 1,91 4,89	0...6,84 0...1,71 0...5,13

Обсуждение

Экссудативный (влажный) перитонит - наиболее тяжелая клиническая форма FIP, которая обычно довольно быстро, в течение буквально нескольких недель, приводит к летальному исходу. В настоящей статье описаны два случая успешной терапии влажной формы FIP. Диагноз ставили на основании данных клинического осмотра, анализа перитонеального экссудата, а также результатов УЗИ, ПЦР, клинического и биохимического анализов крови. У обоих пациентов выявлен асцит с жидким экссудатом, характерным для влажной формы FIP: жидкость соломенного цвета, без запаха, достаточно вязкая, сильно пенящаяся, слегка опалесцирующая, с белыми хлопьями. При первичном анализе крови обнаружено резкое увеличение содержания глобулинов, а также драматическое снижение соотношения альбумин/глобулин на фоне умеренной анемии и гипербилирубинемии. Кроме того, выявлено существенное повышение активности СДГ, ГЛДГ, АсАТ, АлАТ, ГГТ, ЛДГ и ЩФ. Повышенная концентрация глобулинов в плазме крови наряду со сниженным коэффициентом соотношения альбумин/глобулин служит одним из наиболее стабильно выявляющихся показателей при FIP . В сочетании с клиническими признаками, данными УЗИ, ПЦР, результатами анализа крови и выпотной жидкости это послужило основанием для постановки предварительного диагноза влажной формы FIP.

После вынесения такого диагноза терапия традиционно направлена на снижение деструктивных воспалительных проявлений и облегчение состояния животного. Считается, что влажная форма FIP неизлечима и быстро ведет к смерти пациента.

К признакам ремиссии относят отсутствие или существенное снижение объема перитонеально-плевральной выпотной жидкости, исчезновение или значительное уменьшение клинических симптомов, снижение содержания глобулина, повышение соотношения альбумин/глобулин в крови, нормализация гематокрита и набор массы тела .

В процессе терапии обоих пациентов с помощью оригинального подхода, разработанного ветврачом И.О. Переслегиной, удалось достаточно быстро и последовательно добиться достижения всех описанных выше показателей, свидетельствующих о наступлении ремиссии. С особым удовлетворением отмечаем, что оба пациента живы уже в течение более чем длительного срока после установления диагноза влажной формы FIP - 15 мес и 52 мес, соответственно.

Описанная в настоящей статье комплексная методика терапии, хотя и довольно непроста, но полностью воспроизводима (в настоящий момент по этой методике вылечено и продолжает лечиться уже около десятка пациентов). При этом в качестве средства этиотропной терапии использованы предварительно подогретые фосфорилированные полипренолы. Отметим, что ветеринарные препараты на основе фосфорилированных полипренолов, выделенных либо из листьев шелковицы, либо из хвои, изучены в РФ довольно многосторонне. На их основе созданы и широко применяются в ветеринарной практике препараты гамапрен и фоспренил. Показано, что эти препараты обладают как иммуномодулирующим, так и противовирусным действием. Скорее всего, их терапевтический эффект при инфекционном коронавирусном перитоните проявляется комплексно. С одной стороны, эти препараты оказывают противовирусное действие при экспериментальной коронавирусной инфекции, вызванной, например, вирусом гепатита мышей. С другой стороны, после введения в организм при вирусной инфекции фоспренил и гамапрен активируют макрофаги и стимулируют раннюю продукцию ключевых цитокинов (ИЛ-12, ИФН-γ), обеспечивающих формирование Th1 иммунного ответа, которое нарушено при вирусном инфекционном процессе. Это представляется крайне важным с учетом данных о том, что развитие FIP у кошек после заражения коронавирусом напрямую связывают с отсутствием выработки ИЛ-12, необходимого для развития эффективного клеточного иммунного ответа . Более того, при слабом клеточно-опосредованном иммунном ответе, когда наблюдается массовое размножение коронавирусов в макрофагах, заболевание переходит во влажную форму. Это позволяет предположить, что препараты на основе фосфорилированных полипренолов, активирующие макрофагальную активность, можно использовать не только для терапии, но и для профилактики влажной формы FIP. Это особенно важно, поскольку иные рекомендованные способы терапии FIP с использованием ИФН-омега, рекомбинантного кошачьего ИФН, глюкокортикоидов и циклофосфамида показали крайне низкую эффективность . Еще одним, хотя и косвенным свидетельством в пользу эффективности фосфорилированных полипренолов при FIP, служит тот факт, что для этого заболевания характерен феномен антителозависимого усиления вирусной инфекции . Аналогичное явление характерно и для флавивирусных инфекций, при которых препараты на основе фосфорилированных полипренолов особенно эффективны .

Что касается данных о ремиссии, достигнутой у кошек при использовании PI, то они получены при терапии только сухой (неэкссудативной) формы FIP . По мнению авторов, PI может рассматриваться как перспективное средство этиотропной терапии сухой формы FIP.

Библиография

1. Ожерелков С.В., Калинина Е.С, Кожевникова Т.Н., Санин А.В., Тимофеева Т.Ю., Тимофеев А.В., Стивенсон Д.Р. Экспериментальное исследование феномена антителозависимого усиления инфекционности вируса клещевого энцефалита in vitro // ЖМЭИ, 2008; 6:39-43.
2. Рахманина Н.А. Клинико-эпизоотологические особенности и диагностика инфекционного перитонита кошек: автореф. дисс. ... канд. вет. наук. - М., 2007.
3. Санин А.В. FIP - виден ли свет в конце туннеля? // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные, 2011; 4:17-20.
4. Фурман И.М., Васильев И.К., Наровлянский А.Н., Пронин А.В., Санин А.В. Применение препаратов на основе растительных полипренолов при различных формах кошачьего инфекционного перитонита // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные, 2010; 3:42-43.
5. German A. Between a rock and a hard place: diagnosis and treatment of FIP // Abstr. ISFM Feline Symposium 2010, pre-BSAVA Congress.
6. Hartmann K, Ritz S. Treatment of cats with feline infectious peritonitis // Vet Immunol. Immunopathol., 2008; 15; 123(1-2): 172-175.
7. Kipar A., Meli M.L., Failing K., Euler T., Gomes-Keller M.A., Schwartz D., Lutz H., Reinacher M. Natural feline coronavirus infection: differences in cytokine patterns in association with the outcome of infection // Vet Immunol Immunopathol., 2006; 15; 112(3-4): 141-55.
8. Legendre A.M., Bartges J.W. Effect of Polyprenyl Immunostimulant on the survival times of three cats with the dry form of feline infectious peritonitis // Feline Med Surg., 2009; 11(8): 624-626.
9. Pedersen N.C. A review of feline infectious peritonitis virus infection: 1963-2008 // Journal of Feline Medicine and Surgery, 2009; 11: 225-258.
10. Takano T., Katada Y., Moritoh S., Ogasawara M., Satoh K., Satoh R., Tanabe M., Hohdatsu T. Analysis of the mechanism of antibody-dependent enhancement of feline infectious peritonitis virus infection: aminopeptidase N is not important and a process of acidification of the endosome is necessary // J Gen Virol., 2008; 89(Pt 4): 1025-1029.

SUMMARY

I.O. Pereslegina, A.A. Videnina, A.N. Narovlyansky, A.V. Pronin, A.V. Sanin. Novel Approach to FIP Therapy. Studied were two clinical cases with ‘wet’/effusive form of FIP The diagnosis of FIP was made based on the clinical signs, which included ultrasound and fluid examination, blood analysis, and RT-PCR test. Abdominal effusions were found in both cases, RT-PCR was positive, blood analysis revealed significantly elevated globulins level and dramatically decreased albumin:globulin ratio, as well as moderate anaemia, and hyperbilirubinaemia. Abdominal fluid was viscous, straw-coloured, frothed on shaking. Both cats responded favourably to complex treatment that also included pre-warmed phosphorilated polyprenols inoculated into the abdominal cavity immediately after abdominal fluid aspiration. One to two weeks following the beginning of the treatment clinical signs subsided, blood normalized, both cats are still alive, 15 and 52 months after diagnosis of ‘wet’ form of FIP was made.

Материалы, размещенные на данной странице, могут перепечатываться в сети Интернет только при условии размещения гипертекстовой ссылки на наш сайт. Код ссылки приведен ниже:
Ваше описание